دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات

 آمار

تعداد نشریات50
تعداد شماره‌ها2,232
تعداد مقالات20,475
تعداد مشاهده مقاله25,225,579
تعداد دریافت فایل اصل مقاله22,856,425
تفضلی, حامد, شریف زاده, علی. (1399). فراوانی آلودگی به تری تریکوموناس فتوس در گاوهای شهرستان اصفهان. , 17(شماره 3), 3299-3304.
حامد تفضلی; علی شریف زاده. "فراوانی آلودگی به تری تریکوموناس فتوس در گاوهای شهرستان اصفهان". , 17, شماره 3, 1399, 3299-3304.
تفضلی, حامد, شریف زاده, علی. (1399). 'فراوانی آلودگی به تری تریکوموناس فتوس در گاوهای شهرستان اصفهان', , 17(شماره 3), pp. 3299-3304.
تفضلی, حامد, شریف زاده, علی. فراوانی آلودگی به تری تریکوموناس فتوس در گاوهای شهرستان اصفهان. , 1399; 17(شماره 3): 3299-3304.

فراوانی آلودگی به تری تریکوموناس فتوس در گاوهای شهرستان اصفهان

پاتوبیولوژی مقایسه ای
دوره 17، شماره 3 - شماره پیاپی 70، آذر 1399، صفحه 3299-3304  XML اصل مقاله (678.36 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
نویسندگان
حامد تفضلی1؛ علی شریف زاده email 2
1دانش آموخته دانشکده دامپزشکی، واحد شهرکرد، دانشگاه آزاد اسلامی،شهرکرد، ایران
2گروه آموزشی میکروبیولوژی ،دانشکده دامپزشکی، واحد شهرکرد، دانشگاه آزاد اسلامی، شهرکرد، ایران
چکیده
تری تریکوموناس فتوس ، تک یاخته ای است که معمولا در گاو بیماری تولیدمثلی ایجاد کرده و باعث ناباروری و سقط جنین می­گردد. روش مرسوم برای تشخیص آلودگی ، مشاهده مستقیم میکروسکوپی و درصورت زمان محدود برای بررسی،انتقال به محیط انتقالی یا محیط کشت است . هدف از این بررسی تنظیم روش مولکولی برای تشخیص آلودگی تریکوموناسی وتعیین میزان آلودگی درکشتارگاه اصفهان بود. در این بررسی از دو کشتارگاه متفاوت در شهرستان اصفهان 73 گاونر و27 گاوماده موردبررسی قرارگرفتند. با استفاده از سرنگ انسولین استریل و سواپ از رحم و مخاطات تناسلی نمونه گیری صورت گرفت. برای استخراج DNA براساس دستورالعمل شرکت سازنده کیت اقدام گردید(شرکت سیناژن - ایران). آزمایش واکنش زنجیره ی پلیمرازی (Nested PCR)، با بکارگیری پرایمرهای اختصاصیRNA  ریبوزومی تری تریکوموناس فتوس  برای توالی جنس(TFR 1–2) وگونه(TFR3-4) صورت پذیرفت. همه نمونه ها با انجام آزمون Nested PCR  مورد بررسی قرارگرفتند . تعداد 6 گاونر(2/8% )و2 گاوماده (4/7% ) با نشان دادن باند372 بازی آلودگی به جنس و2 گاونرنیز آلودگی به گونه فتوس تری تریکوموناس راباباند374 بازی نشان دادند.سایر نمونه ها با گونه هایی غیر از گونه فتوس مرتبط بودند. بنابراین بر اساس نتایج این تحقیق، شیوع جنس تری تریکوموناس و خصوصا تری تریکوموناس فتوس در نمونه ها ، تاییدکننده لزوم توجه جدی به آزمایشهای غربالگری در گاو به خصوص گاوهای نر می باشد.
کلیدواژه‌ها
تری تریکوموناس فتوس؛ نشخوارکنندگان؛ کشتارگاه؛ Nested PCR
مراجع
  1. Frey C. Hemphill A. Scild M, Stunzi P .Intestinal Tritrichomonas foetus infection in cats in Switzerland detected by in vitro cultivation and PCR.Parasit Res.2009. 104: 783–788.
  2. Reinmann K. Muller N. Kuhnert P. Campero CM. Leitsch D. Hess M. Henning K. Fort M. Muller J. Gottstein B. Frey C. Tritrichomonas foetus isolates cats and cattle show minor genetic differences in unrelated loci ITS-2 and EF-1. Vet Parasit .2012.185: 138-144

 

  1. Alan G. Sarah J. Parasitology an Integrated Approach. UK. John Wiley & Sons, Ltd.2012.
  2. Owen R. John E. (2006). Tritrichomonas foetus. Vet Clin Food Anim.2006. 22: 595–611.
  3. Noakes D. Parkinson T. Englamd G. Arthur’s Veterinary Reproduction and Obsthetrics. UK. Elsevier.2001.
  4. Greenwell P.Younes M. Roughooputh S. Purification of DNases of Tritrichomonas foetus: evidence that these enzymes are glycoproteins. Inter J Parasit. 2008.38: 749–756.
  5. Jesus A. Mendoza I. Susana P. High prevalence of Tritrichomonas foetus infection in Asturiana de la Montana beef cattle kept in extensive conditions in Northern Spain. Vet J.2012. 193: 146-151.
  6. Oliveria M. Fitho A.Borges J. Soares L.Tritrichomonas Foetus in bulls in the state of parnambuco,Brazil.Rev Brast Med Vet.2016.38:449-453
  7. Rae D. Crews J. (2006).Tritrichomonas foetus. Vet Clin Food Anim.2006. 22: 595–611.
  8. Felleisen RS. Lambelet N. Bachmann P. Nicolet J. Muller N. Gottstein B. (1998).Detection ofTritrichomonas foetusby PCR and DNA enzyme immunoassay based on rRNA gene unit sequences.J Clin Microb. 1998.36: 513–519.
  9. Grahn RA. BonDurant R H. VanHoosear KA. Walker RL. Lyons LA. (2005).An improved molecular assay for Tritrichomonas foetus.Vet Parasit.2005.127: 33–41.
  10. Asadpour R. Salehi N. Jafari R. PCR Detection oh Trichomonad Species in the Semen of Bulls.Bulg J Vet Med. 2011.14: 215-220.
  11. Buller N. Corney B. Bovine Trichomonosis. Australian New Zealand Standard Diagnostic Procedure. 2013 http://www.agriculture.gov.au/SiteCollectionDocuments/animal/ahl/ANZSDP-Bovine-trichomoniasis.pdf (assessed 1 August 2017).
  12. Antonio P. Carlos M. Alfredo M. Marlene B. Identification of Tritrichomonas foetus pseudocysts in fresh preputial secretion samples from bulls. Vet Parasit. 2011.175: 1-8.
  13. Campero C. Rodriguez C. Bolondi A. Cacciato C. Cobo E. Perez S. Odeon A. Cipolla A. Bondurant RH. Two-step (culture and PCR) diagnostic approach for differentiation of non-T.foetus trichomonads from genitalia of virgin beef bulls in Argentina. Vet Parasit.2003. 112: 167-175.
  14. Cobo E. Favetto P. Lane V. Friend A. VanHooser K. Mitchell J. BonDurant R. Sensitivity and specificity of culture and PCR of smegma samples of bulls experimentally infected with Tritrichomonas foetus. Theriogen.2007. 68: 853-860.
  15. Rae D. Crews J. Greiner E. Donovan G. Epidemiology of Tritrichomonas foetus in beef bull populations in Florida.Theriogen.2004. 61: 605-618.
  16. Barbara S. Indumathi S. Andy S. Alfonso C. Renata I. Spatio-temporal epidemiology of Tritrichomonas foetus infection in Texas bulls based on state-wide diagnostic laboratory data.Vet Parasit. 2012.186: 450-455.
  17. Evelyn M. Awoke G. Tiny H. Mkhevu M. Prevalence of Campylobacter foetus and Trichomonas foetus among cattle from Southern Africa.Afri. J. Biotec.2011.10:10313-10314
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 218
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 138


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب